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Publiziert am: 05.11.2015

Histologische Klassifikation zystischer Pankreastumoren

Verfasst von: Bence Sipos
Pankreasläsionen, die in der Bildgebung oder makroskopisch zystisch imponieren, können neoplastischer oder nicht neoplastischer Natur sein. Zystische Pankreasläsionen können aufgrund histologischer Eigenschaften als epithelial oder als nicht epithelial eingeteilt werden. Die klinisch wichtigste nicht epitheliale Läsion ist die pankreatische Pseudozyste, die infolge von Pankreatitiden entsteht. In diesem Kapitel werden schwerpunktmäßig die epithelialen neoplastischen zystischen Pankreasläsionen diskutiert, da sie die größte Bedeutung für den klinischen Alltag besitzen. Die histologische Einteilung der zystischen Pankreastumoren beruht einerseits auf den Eigenschaften der Epithelauskleidung, andererseits auf der Zusammensetzung des Stroma.

Einleitung

Pankreasläsionen, die in der Bildgebung oder makroskopisch zystisch imponieren, können neoplastischer oder nicht neoplastischer Natur sein. Zystische Pankreasläsionen können aufgrund histologischer Eigenschaften als epithelial oder als nicht epithelial eingeteilt werden. Die klinisch wichtigste nicht epitheliale Läsion ist die pankreatische Pseudozyste, die infolge von Pankreatitiden entsteht. In diesem Kapitel werden schwerpunktmäßig die epithelialen neoplastischen zystischen Pankreasläsionen diskutiert, da sie die größte Bedeutung für den klinischen Alltag besitzen. Die histologische Einteilung der zystischen Pankreastumoren beruht einerseits auf den Eigenschaften der Epithelauskleidung (z. B. duktal oder intestinal), andererseits auf der Zusammensetzung des Stroma (z. B. ovarielles Stroma bei der muzinös-zystischen Neoplasie). Ein weiteres wichtiges Merkmal für die Klassifizierung ist der bestehende oder fehlende Gangbezug des zystischen Tumors (Hruban et al. 2007; World Health Organization und International Agency for Research on Cancer 2010).

Intraduktale papillär-muzinöse Neoplasie (IPMN)

Die IPMN werden aufgrund des Phänotyps des auskleidenden Epithels (gastrisch, intestinal, pankreatobiliär oder onkozytär) eingeteilt. Der zweite wichtige Aspekt ist die Lokalisation der Tumoren: Man unterscheidet zwischen Hauptgang- und Seitengang-IPMN.

Hauptgang-IPMN

Der häufigste Typ der Hauptgang-IPMN ist der intestinale Typ. Die IPMN vom intestinalen Typ ist durch intraduktale papilläre Proliferate charakterisiert, die meistens eine deutliche Muzinbildung aufweisen. Die Schleimproduktion führt zu Sekretstau und einer Erweiterung des Pankreasganges. In dessen Folge entsteht in vielen Fällen eine chronisch-obstruktive Pankreatitis. Diese geht mit Parenchymschwund sowie periduktaler Fibrose einher. Im Gegensatz zur alkoholinduzierten chronischen Pankreatitis sind Verkalkungen nicht typisch für die IPMN. Das auskleidende Epithel ähnelt in hohem Maße dem Epithel, das man bei klassischen kolorektalen Adenomen findet. Die Epithelzellen sind hochprismatisch und bilden villöse Strukturen (Abb. 1A). Die Einteilung der Dysplasie erfolgt dreistufig (leichtgradige Dysplasie, mäßige Dysplase hochgradige Dysplasie/Carcinoma in situ) und ist weitgehend vergleichbar mit der histologischen Klassifikation der kolorektalen Adenome. 10 bis 50 % der resezierten IPMN vom intestinalen Typ enthalten eine invasive Karzinomkomponente, die beinahe immer ein Muzin produzierendes, in der Regel extensiv verschleimendes Adenokarzinom darstellt (Abb. 1B) (Adsay et al. 2004). Die IPMN vom intestinalen Typ zeigt nicht nur morphologisch, sondern auch immunphänotypisch einen intestinalen Phänotyp. Die Tumorzellen exprimieren die intestinalen Marker MUC2, Zytokeratin-20 und CDX2 mit einer variablen Expression des Pankreasgangepithel-typischen Markers Zytokeratin 7.

IPMN vom pankreatobiliären Typ

Die IPMN vom pankreatobiliären Typ ist die zweithäufigste Form der Hauptgang-IPMN. Sie ist aus komplexen intraduktalen papillären Proliferaten aufgebaut (Abb. 1C). Das Epithel ähnelt dem ortstypischen Pankreasgangepithel mit einer flach-zylindrischen, kuboiden Morphologie. Die Tumorzellen weisen zum Zeitpunkt der Resektion meistens eine mittel- bis hochgradige Polymorphie auf (Abb. 1D). Dieser IPMN-Typ geht mit einer geringen Schleimbildung einher. Ca. 50 % der Fälle sind mit einem invasiven Karzinom assoziiert, das die Charakteristika eines klassischen duktalen Adenokarzinoms trägt. Die invasiven Karzinome haben ein hohes Malignitätspotenzial und sind häufig bereits lokal fortgeschritten. Immunphänotypisch zeigen die Tumorzellen ein ähnliches Profil wie die duktalen Adenokarzinome: Expression von Zytokeratin 7, aberrantem basolateralem MUC1, CEA sowie MUC5AC.

IPMN vom onkozytären Typ

Die seltene Hauptgang-IPMN vom onkozytären Typ zeigt Ähnlichkeiten zum pankreatobiliären Typ. Sie bildet ebenfalls komplexe intraduktale Proliferate und weist häufig eine hochgradige Dysplasie auf. Der Begriff „onkozytär“ bezeichnet ein breites, deutlich eosinophiles Zytoplasma der Tumorzellen. Bisher sind wenige assoziierte invasive onkozytäre Karzinome beschrieben (Basturk et al. 2010).

IPMN vom Seitengangtyp

Die IPMN vom Seitengangtyp entsteht in sekundären Pankreasgängen. Sie bildet meistens kleine multizystische traubenartige Läsionen an der Peripherie des Drüsengewebes (Abb. 2A), die in ca. 30 % der Fälle multifokal sein können (Correa-Gallego et al. 2010). Diese charakteristische Erscheinung ermöglicht eine präoperative Diagnose in der Bildgebung. Die Seitengang-IPMN sind fast ausschließlich durch ein gastrales Epithel ausgekleidet, das in hohem Maße auch mit dem Zelltyp der pankreatischen intraepithelialen Neoplasien (PanIN) vergleichbar ist. Weder morphologisch noch durch molekulare Untersuchungen ist es möglich, kleine IPMN vom gastralen Typ von erweiterten kleinen Gängen mit PanIN-Läsionen zu unterscheiden, sodass die Definition der beiden Läsionen arbiträr ist. Erweiterte Gänge/kleine Zysten unter 5 mm werden als PanIN bezeichnet, größere Läsionen gelten als Seitengang-IPMN (Hruban et al. 2004). IPMN vom gastrischen Typ sind zum Zeitpunkt der Diagnose in ca. 11–30 % der Fälle mit einem invasiven Karzinom assoziiert (Fritz et al. 2012; Rodriguez et al. 2007; Crippa et al. 2010). Das Karzinom entsteht auf dem Boden einer klassischen Adenom-Karzinom-Sequenz, die mit zunehmender Komplexität des auskleidenden Epithels und zunehmenden zytologischen Atypien einhergeht (Abb. 2B). Das invasive Karzinom zeigt eine ähnliche Morphologie wie die meisten duktalen Adenokarzinome des Pankreas. Immunhistochemisch zeigen die gastrischen IPMN eine Expression von gastralen Muzinen wie MUC5AC und MUC6.

Molekulare Veränderungen bei IPMN

Die bisher bekannten molekularen Veränderungen bei den IPMN sind vergleichbar mit den molekularen Alterationen beim duktalen Adenokarzinom: Führend ist eine aktivierende KRAS-Mutation im Kodon 12. Die drei weiteren dominanten molekularen Veränderungen sind inaktivierende genetische und epigenetische Modifikationen in den p53-, SMAD4/DPC4- und CDKN2a(p16)- Genen. Bemerkenswert ist eine neu beschriebene Mutation im GNAS-Gen, die unter den Pankreastumoren ausschließlich in IPMN zu finden ist. Die Frequenz der Mutationen beträgt zwischen 25 % (im gastrischen IPMN) und 100 % (im intestinalen IPMN) (Dal Molin et al. 2013; Wu et al. 2011a).

Muzinös-zystische Neoplasien (MZN)

Im Gegensatz zu IPMN haben muzinös-zystische Neoplasien keinen Bezug zum Gangsystem des Pankreas. Sie entstehen fast ausschließlich bei Frauen charakteristischerweise im Pankreasschwanz. Diese Tumoren können unilokulär (Abb. 3A) oder multilokulär sein. Ihre Größe schwankt zwischen 3 und 15 cm (Kosmahl et al. 2004a). Der Inhalt der Zysten ist häufig zähflüssig glasig (Abb. 3A). Allerdings gibt es auch MZN, die serös anmutende Flüssigkeit enthalten. Das auskleidende Epithel ist meistens hochprismatisch oder bei größeren Tumoren kuboid abgeflacht (Abb. 3B). Diagnoseweisend ist allerdings nicht die Morphologie des Epithels, sondern das typische „ovarielle“ Stroma (Abb. 3B), das sowohl lichtmikroskopisch als auch immunphänotypisch dem Stroma des normalen Ovars ähnelt. Die kompakt gelagerten spindeligen, mesenchymalen Stromazellen exprimieren den Östrogenrezeptor, den Progesteronrezeptor sowie Inhibin-A. Die MZN weisen eine Adenom-Karzinom-Sequenz auf. Mit zunehmendem Dysplasiegrad wird das Epithel mehrreihig und bildet komplexe papilläre oder kribriforme (siebförmige) Formationen. Die zytologischen Unregelmäßigkeiten nehmen ebenfalls zu. Auf dem Boden der MZN entstehen invasive Karzinome, die man in ca. 3–30 % der Fälle findet (Crippa et al. 2008). Diese Karzinome haben meistens einen duktalen Phänotyp. Seltener entstehen auch undifferenzierte Karzinome. Das Vorhandensein eines invasiven Wachstums ist entscheidend für die Prognose der Patientin. Invasive Karzinome, die innerhalb der Grenzen der MZN bleiben, weisen eine exzellente Prognose (über 95 % 5-Jahres-Überlebensrate) auf (Lewis et al. 2013). Hingegen weisen Karzinome, welche die umliegenden Geweben infiltrieren, nur eine 5-Jahres-Überlebensrate um die 50 % auf (Wilentz et al. 1999; Fritz et al. 2009).

Serös-zystische Neoplasien (SZN)

Die serös-zystischen Neoplasien können in drei Subgruppen, das serös-mikrozystische Adenom, das serös-oligozytische Adenom und das Von-Hippel-Lindau-Syndrom-assoziierte seröse Zystadenom, eingeteilt werden, wobei die erste Gruppe weitaus am häufigsten vorkommt. Alle drei serös-zystischen Neoplasien sind durch einen multizystischen Aufbau gekennzeichnet. Die serös-mikrozystische Neoplasie zeigt einen schwammartigen Aufbau, wobei größere Tumoren eine zentrale Vernarbung zeigen (Abb. 3C). Das auskleidende Epithel ist kuboid und einschichtig angeordnet. Typischerweise zeigen die Tumorzellen ein glykogenreiches helles Zytoplasma (Abb. 3D). Atypien kommen nicht vor. Immunphänotypisch sind diese Zellen Alpha-Inhibin- und MUC6-positiv (Kosmahl et al. 2004b). Eine Adenom-Karzinom-Sequenz ist bei diesen Tumoren nicht bekannt, da praktisch alle SZN gutartig sind. Maligne SZN stellen mit ca. 20 publizierten Fällen eine Rarität dar, sodass man im klinischen Alltag mit einem malignen Verlauf nicht rechnen muss. Die serös-oligozystischen Adenome entstehen häufiger im Pankreaskopf und sind schlecht umschrieben, sodass eine präoperative Unterscheidung von einer IPMN sehr schwierig sein kann. Molekularbiologisch gibt es eine führende Veränderung bei MZN, nämlich die Inaktivierung des VHL-Gens durch Punktmutationen oder „loss of heterozygosity“ (Wu et al. 2011b).

Solid-pseudopapilläre Neoplasien (SPN)

Im engeren Sinne sind die solid-pseudopapillären Neoplasien primär solide aufgebaut, weisen aber mit zunehmender Größe ausgedehnte zentrale Nekrosen und Einblutungen auf und imponieren dadurch in der Bildgebung meistens als zystische Tumoren (Abb. 4). Diese Neoplasien können in jeder Pankreasregion auftreten. Typischerweise entsteht die SPN bei jungen Frauen. Die Tumorzellen sind recht monomorph und in pseudopapillären Formationen angeordnet. Die Proliferationsrate dieser Tumoren ist bei den meisten Fällen sehr gering. Immunzytochemisch weisen diese Tumoren einen besonderen Phänotyp auf, der keine Rückschlüsse auf eine „Ursprungszelle“ erlaubt: Das mesenchymale intermediär Filament Vimentin ist immer nachweisbar, und der Bürstensaummarker CD10 ist ebenfalls exprimiert. Epitheliale Marker wie Zytokeratine oder neuroendokrine Marker wie Synaptophysin und Chromogranin sind nicht oder nur fokal in Einzelzellen in den SPN nachweisbar. Diagnoseweisend ist die nukleäre Translokation des physiologisch membranständigen Onkogens Beta-Catenin. Die molekulare Grundlage für dieses charakteristische Färbemuster liegt in einer Punktmutation des Beta-Catenin-Gens (Wu et al. 2011b). Die Morphologie der SPN ist in dieser Tumorgruppe sehr einheitlich und gibt keine Hinweise auf das biologische Verhalten dieser Tumoren. Ca. 5–10 % aller SPN verhalten sich maligne, wobei das einzig sichere Malignitätskriterium das Vorhandensein von Metastasen ist. Angioinvasion oder invasives Wachstum gelten nicht als Merkmale für einen malignen Verlauf (Hruban et al. 2007).

Diagnostische pathologische Untersuchungen

Die präoperative histologische und zytologische Diagnostik haben einen geringen Stellenwert in der Behandlung zystischer Läsionen. Dies liegt zum einen an der Tatsache, dass die meisten symptomatischen oder malignitätsverdächtigen Läsionen primär chirurgisch behandelt werden (Hartwig et al. 2009). Zum zweiten beträgt die Sensitivität der Endosonographie gesteuerten Feinnadelpunktionen hinsichtlich Unterscheidung zwischen muzinösen und nicht muzinösen Läsionen nur um 50 % (Thornton et al. 2013). Das Ziel einer präoperativen Punktionsdiagnostik ist in erster Linie der Malignitätsausschluss, der allerdings wegen des 60–70 %igen negativen prädiktiven Werts der Zytologie nicht sicher gewährleistet werden kann. Diese Unschärfe der Methode entsteht aufgrund der heterogenen Verteilung der dysplastischen oder malignen Veränderungen innerhalb der zystischen Neoplasien, die zum Probenahmefehler führt.
Literatur
Adsay NV, Merati K, Basturk O, Iacobuzio-Donahue C, Levi E, Cheng JD, Sarkar FH, Hruban RH, Klimstra DS (2004) Pathologically and biologically distinct types of epithelium in intraductal papillary mucinous neoplasms: delineation of an „intestinal“ pathway of carcinogenesis in the pancreas. Am J Surg Pathol 28:839–848PubMedCrossRef
Basturk O, Khayyata S, Klimstra DS, Hruban RH, Zamboni G, Coban I, Adsay NV (2010) Preferential expression of MUC6 in oncocytic and pancreatobiliary types of intraductal papillary neoplasms highlights a pyloropancreatic pathway, distinct from the intestinal pathway, in pancreatic carcinogenesis. Am J Surg Pathol 34:364–370PubMedPubMedCentralCrossRef
Correa-Gallego C, Ferrone CR, Thayer SP, Wargo JA, Warshaw AL, Fernández-Del Castillo C (2010) Incidental pancreatic cysts: do we really know what we are watching? Pancreatol Off J Int Assoc Pancreatol IAP Al 10:144–150CrossRef
Crippa S, Salvia R, Warshaw AL, Domínguez I, Bassi C, Falconi M, Thayer SP, Zamboni G, Lauwers GY, Mino-Kenudson M, Capelli P, Pederzoli P, Castillo CF (2008) Mucinous cystic neoplasm of the pancreas is not an aggressive entity: lessons from 163 resected patients. Ann Surg 247:571–579PubMedPubMedCentralCrossRef
Crippa S, Fernández-Del Castillo C, Salvia R, Finkelstein D, Bassi C, Domínguez I, Muzikansky A, Thayer SP, Falconi M, Mino-Kenudson M, Capelli P, Lauwers GY, Partelli S, Pederzoli P, Warshaw AL (2010) Mucin-producing neoplasms of the pancreas: an analysis of distinguishing clinical and epidemiologic characteristics. Clin Gastroenterol Hepatol Off Clin Pr J Am Gastroenterol Assoc 8:213–219CrossRef
Dal Molin M, Matthaei H, Wu J, Blackford A, Debeljak M, Rezaee N, Wolfgang CL, Butturini G, Salvia R, Bassi C, Goggins MG, Kinzler KW, Vogelstein B, Eshleman JR, Hruban RH, Maitra A (2013) Clinicopathological correlates of activating GNAS mutations in Intraductal Papillary Mucinous Neoplasm (IPMN) of the pancreas. Ann Surg Oncol
Fritz S, Warshaw AL, Thayer SP (2009) Management of mucin-producing cystic neoplasms of the pancreas. Oncologist 14:125–136PubMedPubMedCentralCrossRef
Fritz S, Klauss M, Bergmann F, Hackert T, Hartwig W, Strobel O, Bundy BD, Büchler MW, Werner J (2012) Small (Sendai negative) branch-duct IPMNs: not harmless. Ann Surg 256:313–320PubMedCrossRef
Hartwig W, Schneider L, Diener MK, Bergmann F, Büchler MW, Werner J (2009) Preoperative tissue diagnosis for tumours of the pancreas. Br J Surg 96:5–20PubMedCrossRef
Hruban RH, Takaori K, Klimstra DS, Adsay NV, Albores-Saavedra J, Biankin AV, Biankin SA, Compton C, Fukushima N, Furukawa T, Goggins M, Kato Y, Klöppel G, Longnecker DS, Lüttges J, Maitra A, Offerhaus GJA, Shimizu M, Yonezawa S (2004) An illustrated consensus on the classification of pancreatic intraepithelial neoplasia and intraductal papillary mucinous neoplasms. Am J Surg Pathol 28:977–987PubMedCrossRef
Hruban RH, Pitman MB, Klimstra DS, American Registry of Pathology, Armed Forces Institute of Pathology (U.S.) (2007) Tumors of the pancreas. American Registry of Pathology in collaboration with the Armed Forces Institute of Pathology, Washington, DC
Kosmahl M, Pauser U, Peters K, Sipos B, Lüttges J, Kremer B, Klöppel G (2004a) Cystic neoplasms of the pancreas and tumor-like lesions with cystic features: a review of 418 cases and a classification proposal. Virchows Arch Int J Pathol 445:168–178CrossRef
Kosmahl M, Wagner J, Peters K, Sipos B, Klöppel G (2004b) Serous cystic neoplasms of the pancreas: an immunohistochemical analysis revealing alpha-inhibin, neuron-specific enolase, and MUC6 as new markers. Am J Surg Pathol 28:339–346PubMedCrossRef
Lewis GH, Wang H, Bellizzi AM, Klein AP, Askin FB, Schwartz LE, Schulick RD, Wolfgang CL, Cameron JL, O’Reilly EM, Yu KH, Hruban RH (2013) Prognosis of minimally invasive carcinoma arising in mucinous cystic neoplasms of the pancreas. Am J Surg Pathol 37:601–605PubMedPubMedCentralCrossRef
Rodriguez JR, Salvia R, Crippa S, Warshaw AL, Bassi C, Falconi M, Thayer SP, Lauwers GY, Capelli P, Mino-Kenudson M, Razo O, McGrath D, Pederzoli P, Fernández-Del Castillo C (2007) Branch-duct intraductal papillary mucinous neoplasms: observations in 145 patients who underwent resection. Gastroenterology 133:72–79, quiz 309–310PubMedPubMedCentralCrossRef
Thornton GD, McPhail MJW, Nayagam S, Hewitt MJ, Vlavianos P, Monahan KJ (2013) Endoscopic ultrasound guided fine needle aspiration for the diagnosis of pancreatic cystic neoplasms: a meta-analysis. Pancreatol Off J Int Assoc Pancreatol IAP Al 13:48–57CrossRef
Wilentz RE, Albores-Saavedra J, Zahurak M, Talamini MA, Yeo CJ, Cameron JL, Hruban RH (1999) Pathologic examination accurately predicts prognosis in mucinous cystic neoplasms of the pancreas. Am J Surg Pathol 23:1320–1327PubMedCrossRef
World Health Organization, International Agency for Research on Cancer (2010) WHO classification of tumours of the digestive system. 4. Aufl. International Agency for Research on Cancer, Lyon
Wu J, Matthaei H, Maitra A, Dal Molin M, Wood LD, Eshleman JR, Goggins M, Canto MI, Schulick RD, Edil BH, Wolfgang CL, Klein AP, Diaz LA, Allen PJ, Schmidt CM, Kinzler KW, Papadopoulos N, Hruban RH, Vogelstein B (2011a) Recurrent GNAS mutations define an unexpected pathway for pancreatic cyst development. Sci Transl Med 3:92ra66PubMedPubMedCentralCrossRef
Wu J, Jiao Y, Dal Molin M, Maitra A, De Wilde RF, Wood LD, Eshleman JR, Goggins MG, Wolfgang CL, Canto MI, Schulick RD, Edil BH, Choti MA, Adsay V, Klimstra DS, Offerhaus GJA, Klein AP, Kopelovich L, Carter H, Karchin R, Allen PJ, Schmidt CM, Naito Y, Diaz LA, Kinzler KW, Papadopoulos N, Hruban RH, Vogelstein B (2011b) Whole-exome sequencing of neoplastic cysts of the pancreas reveals recurrent mutations in components of ubiquitin-dependent pathways. Proc Natl Acad Sci 108:21188–21193PubMedPubMedCentralCrossRef