Analytik
Methode 1: Biuret-Methode (empfohlene Referenzmethode) mit 0,5 mL CSF angereichert durch
Proteinfällung mit Perchlorsäure (66 g/L), zusätzliche Fällung kleiner Eiweißmoleküle (
Akute-Phase-Proteine) mit Trichloressigsäure (30 g/L) bzw.
Phosphorwolframsäure (2 g in 2
mol/L H2SO4); dadurch werden CSF-Störfaktoren eliminiert, z. B.
Glukose, Ascorbinsäure; Lösen des Sediments in 2 mol/L NaOH, Fotometrie gegen Reagenzienleerwert bei 545 nm (d = 2 cm) oder 340 nm,
Nachweisgrenze 40 mg/L.
Methode 2:
Folin-Ciocalteu-Methode mit 0,1 mL CSF: Biuret-Reaktion plus Phosphorwolframsäure-Phosphormolybdänsäure-Reagenz plus Folinreagenz (Farbbildung mit
Tryptophan,
Tyrosin), Fotometrie gegen Reagenzienleerwert bei 578 nm,
Nachweisgrenze 25 mg/L; Störfaktor: Medikamente u. a.; Einflussgröße: Gehalt an aromatischen Aminosaüren der Proteine.
Methode 3: Benzethoniumchlorid-Turbidimetrie bei 505 nm mit 0,015 mL CSF,
Nachweisgrenze 20 mg/L, mechanisierbar, wenige Störfaktoren z. B. Plasmaersatzmittel auf Gelatinebasis.
Methode 4: Turbidimetrie mit Trichloressigsäure (30 g/L) und 0,2 mL CSF bei 436 nm gegen Reagenzienleerwert,
Nachweisgrenze 20 mg/L, bzw. nephelometrisch mit 0,02 mL CSF, Nachweisgrenze 100 mg/L mechanisierbar; Störfaktor: nicht abzentrifugierbare Partikel.
Methode 5: Pyrogallol-Rot-Molybdat-Methode bei 578, 598, 604 nm mit 0,02 (0,05) mL CSF,
Nachweisgrenze 6–10 mg/L, mechanisierbar, wenige Störfaktoren.
Methode 6: Coomassie-Blau-Methode mit Orthophosphorsäure und 0,02 mL CSF, Fotometrie bei 578 nm, 623 nm,
Nachweisgrenze 2–10 mg/L, mechanisierbar, wenige Störfaktoren.
Allgemeiner Störfaktor: Hämolyse,
Xanthochromie; Korrektur mittels Leerwert erforderlich. Allgemeine Einflussgröße: abgenommene Liquormenge. Bestimmung von QGesamt-Protein = [Liquor-Protein]/[Serum-Protein] (
Protein, gesamt im Serum (Plasma)).