Skip to main content
Hauptrubriken
CME Facharzt-Training Webinare Zeitschriften Bücher e.Medpedia Podcast
Service
Jobbörse Info & Hilfe
Fachgebiete
Anästhesiologie Allgemeinmedizin Arbeitsmedizin Augenheilkunde Chirurgie Dermatologie Gynäkologie und Geburtshilfe HNO Innere Medizin Kardiologie Neurologie Onkologie und Hämatologie Orthopädie und Unfallchirurgie Pädiatrie Pathologie Psychiatrie Radiologie Rechtsmedizin Urologie Zahnmedizin
Themen
Typ-2-Diabetes und Adipositas Klimawandel und Gesundheit Neues aus dem Markt Praxis und Beruf Seltene Erkrankungen GOÄ & EBM Panorama
Sammlungen
Kasuistiken Algorithmen & Infografiken Blickdiagnosen Arthropedia FlapFinder (für Dermatochirurgen) Videos Kongressberichterstattung Medizin für Apothekerinnen und Apotheker Für Ärztinnen und Ärzte in Weiterbildung Für Medizinstudierende Patientenratgeber
Erweiterte Suche
Anmelden
nach oben
Die Dermatologie
Erschienen in:

25.11.2024 | Melanom | CME

Immunhistochemische Untersuchungen beim malignen Melanom

Grundlagen und besondere Aspekte

verfasst von: Prof. Dr. med. Cornelia Sigrid Lissi Müller

Erschienen in: Die Dermatologie | Ausgabe 12/2024

zum CME-Kurs Einloggen, um Zugang zu erhalten

Zusammenfassung

Immunhistochemische Untersuchungen gehören zu den seit vielen Jahren angewendeten Untersuchungen in der Dermatopathologie und Pathologie und sind aus der Tumordiagnostik nicht mehr wegzudenken. Ziel ist die Identifikation und Klassifizierung von Tumorzellen, die bestimmte Antigene exprimieren. Das maligne Melanom kann durch eine Vielzahl an gut beschriebenen und standardisierten Antikörpern charakterisiert werden, sodass immunhistochemische Färbungen im Rahmen der Melanomdiagnostik, der differenzialdiagnostischen Abgrenzung anderer Tumoren, der Tumordickenbestimmung, der Diagnostik von Tumormetastasen und auch in der Diagnostik der Wächterlymphknoten Anwendung finden. Von hoher diagnostischer Relevanz ist die umfassende Kenntnis der Expressionsprofile und der spezifischen Färbemuster der jeweilig verwendeten Antikörper mit dem Ziel, Fehldiagnosen zu vermeiden. Den perfekten Antikörper mit maximaler Sensitivität bei höchster Spezifität gibt es nicht. Zudem ersetzt die Immunhistochemie in keinem Fall die konventionelle Begutachtung und Interpretation der Tumorproben. Erst in der Symbiose mit klinischen und konventionell-histologischen Befunden haben immunhistochemische Färbungen einen diagnostischen Wert.
Literatur
1.
2.
3.
4.
Cerroni LGC, Metze D, Kutzner H, Kerl H (2016) Histopathologie der Haut. Springer, Berlin, HeidelbergCrossRef
5.
6.
Böer-Auer AKH, Tschandl P (2022) Pattern Analysis for Histopathologic Diagnosis of Melanocytic Lesions: A Guide to Practical Dermatopathology, 1. Aufl. SpringerCrossRef
7.
8.
de Wit NJ, van Muijen GN, Ruiter DJ (2004) Immunohistochemistry in melanocytic proliferative lesions. Histopathology 44(6):517–541PubMedCrossRef
9.
Rawson RV et al (2022) Diagnostic utility of PRAME, p53 and 5‑hmC immunostaining for distinguishing melanomas from naevi, neurofibromas, scars and other histological mimics. Pathology 54(7):863–873PubMedCrossRef
10.
Gosman LM, Tapoi DA, Costache M (2023) Cutaneous Melanoma: A Review of Multifactorial Pathogenesis, Immunohistochemistry, and Emerging Biomarkers for Early Detection and Management. Int J Mol Sci 24(21)
11.
Robson A, Allen P, Hollowood K (2001) S100 expression in cutaneous scars: a potential diagnostic pitfall in the diagnosis of desmoplastic melanoma. Histopathology 38(2):135–140PubMedCrossRef
12.
Christensen KN et al (2016) Comparison of MITF and Melan‑A Immunohistochemistry During Mohs Surgery for Lentigo Maligna-Type Melanoma In Situ and Lentigo Maligna Melanoma. Dermatol Surg 42(2):167–175PubMedCrossRef
13.
Mohanty SK et al (2018) Microphthalmia-associated transcription factor (MiTF): Promiscuous staining patterns in fibrohistiocytic lesions is a potential pitfall. Pathol Res Pract 214(6):821–825PubMedCrossRef
14.
Naffouje S et al (2015) Microphthalmia transcription factor in malignant melanoma predicts occult sentinel lymph node metastases and survival. Melanoma Res 25(6):496–502PubMedCrossRef
15.
King R et al (2001) Microphthalmia transcription factor expression in cutaneous benign, malignant melanocytic, and nonmelanocytic tumors. Am J Surg Pathol 25(1):51–57PubMedCrossRef
16.
Miettinen M et al (2015) Sox10—a marker for not only schwannian and melanocytic neoplasms but also myoepithelial cell tumors of soft tissue: a systematic analysis of 5134 tumors. Am J Surg Pathol 39(6):826–835PubMedPubMedCentralCrossRef
17.
Behrens EL et al (2019) SOX-10 staining in dermal scars. J Cutan Pathol 46(8):579–585PubMedCrossRef
18.
Buonaccorsi JN et al (2014) Diagnostic utility and comparative immunohistochemical analysis of MITF‑1 and SOX10 to distinguish melanoma in situ and actinic keratosis: a clinicopathological and immunohistochemical study of 70 cases. Am J Dermatopathol 36(2):124–130PubMedCrossRef
19.
Saleem A, Narala S, Raghavan SS (2022) Immunohistochemistry in melanocytic lesions: Updates with a practical review for pathologists. Semin Diagn Pathol 39(4):239–247PubMedCrossRef
20.
Shidham VB et al (2001) Evaluation of micrometastases in sentinel lymph nodes of cutaneous melanoma: higher diagnostic accuracy with Melan‑A and MART‑1 compared with S‑100 protein and HMB-45. Am J Surg Pathol 25(8):1039–1046PubMedCrossRef
21.
Coulie PG et al (1994) A new gene coding for a differentiation antigen recognized by autologous cytolytic T lymphocytes on HLA-A2 melanomas. J Exp Med 180(1):35–42PubMedCrossRef
22.
Kawakami Y et al (1994) Cloning of the gene coding for a shared human melanoma antigen recognized by autologous T cells infiltrating into tumor. Proc Natl Acad Sci U S A 91(9):3515–3519PubMedPubMedCentralCrossRef
23.
Chung HJ et al (2015) “Melanocytic Nests Arising in Lichenoid Inflammation”: Reappraisal of the Terminology “Melanocytic Pseudonests”. Am J Dermatopathol 37(12):940–943PubMedPubMedCentralCrossRef
24.
Panse G, McNiff JM (2021) Lichenoid dermatoses with pseudomelanocytic nests vs inflamed melanoma in situ: A comparative study. J Cutan Pathol 48(6):745–749PubMedCrossRef
25.
26.
Lohman ME et al (2021) The utility of PRAME staining in identifying malignant transformation of melanocytic nevi. J Cutan Pathol 48(7):856–862PubMedCrossRef
27.
Gradecki SE et al (2021) PRAME immunohistochemistry as an adjunct for diagnosis and histological margin assessment in lentigo maligna. Histopathology 78(7):1000–1008PubMedCrossRef
28.
Lezcano C et al (2020) Immunohistochemistry for PRAME in the Distinction of Nodal Nevi From Metastatic Melanoma. Am J Surg Pathol 44(4):503–508PubMedPubMedCentralCrossRef
29.
Cassalia F et al (2024) PRAME Updated: Diagnostic, Prognostic, and Therapeutic Role in Skin Cancer. Int J Mol Sci 25(3)
30.
Chen YP et al (2023) PRAME is a useful marker for the differential diagnosis of melanocytic tumours and histological mimics. Histopathology 82(2):285–295PubMedCrossRef
31.
Hornick JL et al (2023) PRAME Expression Is a Useful Tool in the Diagnosis of Primary and Metastatic Dedifferentiated and Undifferentiated Melanoma. Am J Surg Pathol 47(12):1390–1397PubMedCrossRef
32.
33.
Chinchanikar SS, Fraga GR (2024) Ancillary immunohistochemistry testing for loss of p16 in melanoma: A systematic review and meta-analysis of diagnostic accuracy studies. J Cutan Pathol
34.
Koh SS, Cassarino DS (2018) Immunohistochemical Expression of p16 in Melanocytic Lesions: An Updated Review and Meta-analysis. Arch Pathol Lab Med 142(7):815–828PubMedCrossRef
35.
Stubbs RJ et al (1986) Improved method for the determination of indomethacin in plasma and urine by reversed-phase high-performance liquid chromatography. J Chromatogr 383(2):432–437PubMedCrossRef
36.
Tapoi DA et al (2024) The Prognostic Value of Proliferative Activity in Cutaneous Melanoma: A Pilot Study Evaluating the Mitotic Rate and Ki67 Index to Predict Patient Outcomes. Biomedicines 12(6)
37.
Gerdes J et al (1983) Production of a mouse monoclonal antibody reactive with a human nuclear antigen associated with cell proliferation. Int J Cancer 31(1):13–20PubMedCrossRef
38.
Mert M et al (2024) PRAME and Historical Immunohistochemical Antibodies Ki-67, P16, and HMB-45 in Ambiguous Melanocytic Tumors. Am J Dermatopathol
39.
Müller CSL et al (2021) Current concepts of ectopic nodal inclusions with special emphasis on nodal nevi. J Dtsch Dermatol Ges 19(8):1145–1157PubMed
40.
Schimming TT et al (2012) pHH3 immunostaining improves interobserver agreement of mitotic index in thin melanomas. Am J Dermatopathol 34(3):266–269PubMedCrossRef
41.
Garbe C et al (2011) Histopathological diagnostics of malignant melanoma in accordance with the recent AJCC classification 2009: Review of the literature and recommendations for general practice. J Dtsch Dermatol Ges 9(9):690–699PubMed
42.
Garbe C et al (2016) Mitotic rate in primary melanoma: interobserver and intraobserver reliability, analyzed using H&E sections and immunohistochemistry. J Dtsch Dermatol Ges 14(9):910–915PubMed
43.
Ottmann K, Tronnier M, Mitteldorf C (2015) Detection of mitotic figures in thin melanomas—immunohistochemistry does not replace the careful search for mitotic figures in hematoxylin-eosin stain. J Am Acad Dermatol 73(4):637–644PubMedCrossRef
44.
Gershenwald JE (2023) Mitotic rate in primary cutaneous melanoma: Cell division matters. Cancer 129(15):2290–2293PubMedCrossRef
45.
Nielsen PS et al (2016) Automated quantification of proliferation with automated hot-spot selection in phosphohistone H3/MART1 dual-stained stage I/II melanoma. Diagn Pathol 11:35PubMedPubMedCentralCrossRef
46.
47.
48.
49.
Utikal J et al (2024) S1-Guideline Sebaceous Carcinoma. J Dtsch Dermatol Ges 22(5):730–747PubMed
50.
Fernandez-Flores A, Singh R, Cassarino DS (2023) Top 10 Differential Diagnoses for Desmoplastic Melanoma. Head Neck Pathol 17(1):143–153PubMedPubMedCentralCrossRef
51.
52.
Plaza JA et al (2016) Desmoplastic melanoma: an updated immunohistochemical analysis of 40 cases with a proposal for an additional panel of stains for diagnosis. J Cutan Pathol 43(4):313–323PubMedCrossRef
53.
Ohsie SJ et al (2008) Immunohistochemical characteristics of melanoma. J Cutan Pathol 35(5):433–444PubMedCrossRef
54.
Rupp NJ et al (2018) New observations in tumor cell plasticity: mutational profiling in a case of metastatic melanoma with biphasic sarcomatoid transdifferentiation. Virchows Arch 473(4):517–521PubMedCrossRef
55.
Agaimy A et al (2016) Metastatic Malignant Melanoma With Complete Loss of Differentiation Markers (Undifferentiated/Dedifferentiated Melanoma): Analysis of 14 Patients Emphasizing Phenotypic Plasticity and the Value of Molecular Testing as Surrogate Diagnostic Marker. Am J Surg Pathol 40(2):181–191PubMedCrossRef
56.
Valiga AA et al (2022) Sarcomatoid Dedifferentiated Melanoma: The Diagnostic Role of Next-Generation Sequencing. Am J Dermatopathol 44(4):282–286PubMedCrossRef
57.
Cazzato G et al (2021) Dedifferentiated Melanoma: A Diagnostic Histological Pitfall-Review of the Literature with Case Presentation. Dermatopathology 8(4):494–501PubMedPubMedCentralCrossRef
58.
Loper R, Schon MP, Mitteldorf C (2024) Melanocyte Density in the Diagnosis of Melanoma In Situ in Sun-Damaged Skin. Am J Dermatopathol 46(6):358–364PubMed
59.
Ferrara G et al (2020) Melanocytic and pseudomelanocytic nests coexist in interface dermatitis from head-neck sun-exposed skin: A report of three cases. J Cutan Pathol 47(7):649–653PubMedCrossRef
60.
Roy SF, Panse G, McNiff JM (2023) PRAME immunohistochemistry can distinguish melanocytic pseudonests of lichenoid reactions from melanoma in situ. J Cutan Pathol 50(5):450–454PubMedCrossRef
61.
Otaibi S et al (2011) NGFR (p75) expression in cutaneous scars; Further evidence for a potential pitfall in evaluation of reexcision scars of cutaneous neoplasms, in particular desmoplastic melanoma. Am J Dermatopathol 33(1):65–71PubMedCrossRef
62.
de Waal AC et al (2014) Limited role for histopathological examination of re-excision specimens of completely excised melanomas. Virchows Arch 465(2):225–231PubMedCrossRef
63.
Ramos-Herberth FI et al (2010) SOX10 immunostaining distinguishes desmoplastic melanoma from excision scar. J Cutan Pathol 37(9):944–952PubMedCrossRef
64.
Reynisdottir I, Massague J (1997) The subcellular locations of p15(Ink4b) and p27(Kip1) coordinate their inhibitory interactions with cdk4 and cdk2. Genes Dev 11(4):492–503PubMedCrossRef
65.
Smith EH et al (2016) Immunohistochemical evaluation of p16 expression in cutaneous histiocytic, fibrohistiocytic and undifferentiated lesions. J Cutan Pathol 43(8):671–678PubMedCrossRef
66.
Titus LJ et al (2018) Malpractice Concerns, Defensive Medicine, and the Histopathology Diagnosis of Melanocytic Skin Lesions. Am J Clin Pathol 150(4):338–345PubMedPubMedCentralCrossRef
67.
Ojukwu K et al (2024) Immunohistochemistry for Diagnosing Melanoma in Older Adults. JAMA Dermatol 160(4):434–440PubMedCrossRef
68.
69.
Clayton DA et al (2023) Are Pathologists Self-Aware of Their Diagnostic Accuracy? Metacognition and the Diagnostic Process in Pathology. Med Decis Making 43(2):164–174PubMedCrossRef
70.
Müller CSL (2022) Pitfalls in dermatohistology : Stumbling blocks and problems in routine dermatopathology. Hautarzt 73(2):138–145PubMedCrossRef
71.
Kerl H, Cerroni L (2011) “Standard of reasonable care” in dermatopathology. J Dtsch Dermatol Ges 9(9):721–722PubMed
72.
Ferrara G et al (2015) Prior knowledge of the clinical picture does not introduce bias in the histopathologic diagnosis of melanocytic skin lesions. J Cutan Pathol 42(12):953–958PubMedCrossRef
Metadaten
Titel
Immunhistochemische Untersuchungen beim malignen Melanom
Grundlagen und besondere Aspekte
verfasst von
Prof. Dr. med. Cornelia Sigrid Lissi Müller
Publikationsdatum
25.11.2024
Verlag
Springer Medizin
Erschienen in
Die Dermatologie / Ausgabe 12/2024
Print ISSN: 2731-7005
Elektronische ISSN: 2731-7013
DOI
https://doi.org/10.1007/s00105-024-05424-6

Weitere Artikel der Ausgabe 12/2024

Verdacht auf genetisch bedingte Hautfragilität bei Kindern? So gehen Sie vor

Was passiert, wenn die Haut fragil wird

Sind diese Nagelveränderungen gefährlich?

Was wandert hier unter der Haut?

One Minute Wonder

  • One Minute Wonder

Jeden Winter neue schmerzhafte Ulzera und Nekrosen

Neu im Fachgebiet Onkologie

Polypen bei nahen Verwandten – erhöhtes Darmkrebsrisiko

Werden bei erstgradigen Verwandten gutartige Darmpolypen identifiziert, ist das Risiko, selbst an einem Kolorektalkarzinom zu erkranken, deutlich erhöht – vor allem das für eine früh beginnende Erkrankung. Hier könnte sich eine frühe Koloskopie besonders lohnen.

KI-gestütztes Mammografiescreening überzeugt im Praxistest

Mit dem Einsatz künstlicher Intelligenz lässt sich die Detektionsrate im Mammografiescreening offenbar deutlich steigern. Mehr unnötige Zusatzuntersuchungen sind laut der Studie aus Deutschland nicht zu befürchten.

Welche Krebserkrankungen bei Zöliakie häufiger auftreten

Eine große Kohortenstudie hat den Zusammenhang zwischen Zöliakie und gastrointestinalen Krebserkrankungen und inflammatorischen Krankheiten untersucht. Neben gastrointestinalen Tumoren ist auch ein nicht solider Krebs häufiger.

Adjuvanter PD-L1-Hemmer verhindert Rezidive bei Hochrisiko-Urothelkarzinom

Sind Menschen mit muskelinvasivem Urothelkarzinom für die neoadjuvante platinbasierte Therapie nicht geeignet oder sprechen sie darauf nicht gut an, ist Pembrolizumab eine adjuvante Alternative: Die krankheitsfreie Lebenszeit wird dadurch mehr als verdoppelt.

Update Onkologie

Bestellen Sie unseren Fach-Newsletter und bleiben Sie gut informiert.

Newsletter bestellen
Bildnachweise