Skip to main content
Erschienen in: Die Pathologie 2/2021

08.10.2021 | Hauptreferate: Hauptprogramm der DGP

Modellsysteme in der gastroenterologischen Forschung

Vom Tiermodell über humane Organoide in die Klinik

verfasst von: Frank Arnold, Prof. Dr. Alexander Kleger

Erschienen in: Die Pathologie | Sonderheft 2/2021

Einloggen, um Zugang zu erhalten

Zusammenfassung

Über die letzten Jahrzehnte haben sich verschiedene Modelle in der gastroenterologischen Forschung etabliert, die erheblich dazu beigetragen haben die (patho-)physiologischen Prozesse verschiedener gastrointestinaler (GI) Krankheiten (Entzündungen, Organverletzungen, Karzinome) besser zu verstehen. Dieser Review konzentriert sich auf solche unterschiedlichen Modelle, darunter genetisch veränderte Mausmodelle (GVMM), Xenografts und organoidbasierte Kultursysteme. GVMMs legten dabei den Grundstein zur erfolgreichen Modellierung dieser Krankheiten. Diese haben den entscheidenden Vorteil, dass Erkrankungen in ihrer physiologischen Umgebung beurteilt werden können und erlauben so den Einfluss verschiedener Zelltypen (Epithel, Fibroblast, Immunzellen) zu untersuchen. Die Diskrepanz zwischen Maus und Mensch beinhaltet jedoch einen entscheidenden Nachteil, der zumindest teilweise durch Transplantation humaner Zellen in immungeschwächten Wirtstieren umgangen werden konnte. Die zeit- und arbeitsintensive Generierung von solchen Xenograftmodellen schränkt jedoch deren Nützlichkeit für ein zeitnahes präklinisches Screening erheblich ein. Neuartige organoidbasierte humane Zellkultursysteme aus adulten Stammzellen oder pluripotenten Stammzellen sind ein vielversprechendes humanes Tool zur Modellierung von GI-Erkrankungen. Bereits heute zeigen erste Ergebnisse deren Nützlichkeit in der Regulation adulter Gewebehomöostase, Regeneration und Tumorentwicklung. Darüber hinaus lässt sich dieses System einfach in der klinischen Diagnostik für Tumorpatienten etablieren und ermöglicht so eine zeitnahe Ex-vivo-Pharmakotypisierung, um personalisierte Therapiestrategien zu entwickeln.
Literatur
1.
Zurück zum Zitat Arnold F, Gout J, Wiese H et al (2021) RINT1 regulates SUMOylation and the DNA damage response to preserve cellular homeostasis in pancreatic cancer. Cancer Res 81:1758–1774CrossRef Arnold F, Gout J, Wiese H et al (2021) RINT1 regulates SUMOylation and the DNA damage response to preserve cellular homeostasis in pancreatic cancer. Cancer Res 81:1758–1774CrossRef
2.
Zurück zum Zitat Arnold F, Mahaddalkar PU, Kraus JM et al (2021) Functional genomic screening during somatic cell reprogramming identifies DKK3 as a roadblock of organ regeneration. Adv Sci 8:2100626CrossRef Arnold F, Mahaddalkar PU, Kraus JM et al (2021) Functional genomic screening during somatic cell reprogramming identifies DKK3 as a roadblock of organ regeneration. Adv Sci 8:2100626CrossRef
3.
Zurück zum Zitat Beutel AK, Schütte L, Scheible J et al (2021) A prospective feasibility trial to challenge patient-derived pancreatic cancer organoids in predicting treatment response. Cancers (Basel) 13(11):2539CrossRef Beutel AK, Schütte L, Scheible J et al (2021) A prospective feasibility trial to challenge patient-derived pancreatic cancer organoids in predicting treatment response. Cancers (Basel) 13(11):2539CrossRef
4.
Zurück zum Zitat Breunig M, Merkle J, Wagner M et al (2021) Modeling plasticity and dysplasia of pancreatic ductal organoids derived from human pluripotent stem cells. Cell Stem Cell 28:1105–1124.e19CrossRef Breunig M, Merkle J, Wagner M et al (2021) Modeling plasticity and dysplasia of pancreatic ductal organoids derived from human pluripotent stem cells. Cell Stem Cell 28:1105–1124.e19CrossRef
5.
Zurück zum Zitat Bürtin F, Mullins CS, Linnebacher M (2020) Mouse models of colorectal cancer: past, present and future perspectives. World J Gastroenterol 26:1394–1426CrossRef Bürtin F, Mullins CS, Linnebacher M (2020) Mouse models of colorectal cancer: past, present and future perspectives. World J Gastroenterol 26:1394–1426CrossRef
6.
Zurück zum Zitat Dekkers JF, Berkers G, Kruisselbrink E et al (2016) Characterizing responses to CFTR-modulating drugs using rectal organoids derived from subjects with cystic fibrosis. Sci Transl Med 8:344ra384CrossRef Dekkers JF, Berkers G, Kruisselbrink E et al (2016) Characterizing responses to CFTR-modulating drugs using rectal organoids derived from subjects with cystic fibrosis. Sci Transl Med 8:344ra384CrossRef
7.
Zurück zum Zitat Doyle A, McGarry MP, Lee NA et al (2012) The construction of transgenic and gene knockout/knockin mouse models of human disease. Transgenic Res 21:327–349CrossRef Doyle A, McGarry MP, Lee NA et al (2012) The construction of transgenic and gene knockout/knockin mouse models of human disease. Transgenic Res 21:327–349CrossRef
8.
Zurück zum Zitat Elyada E, Bolisetty M, Laise P et al (2019) Cross-species single-cell analysis of pancreatic ductal adenocarcinoma reveals antigen-presenting cancer-associated fibroblasts. Cancer Discov 9:1102–1123CrossRef Elyada E, Bolisetty M, Laise P et al (2019) Cross-species single-cell analysis of pancreatic ductal adenocarcinoma reveals antigen-presenting cancer-associated fibroblasts. Cancer Discov 9:1102–1123CrossRef
9.
Zurück zum Zitat Frappart PO, Walter K, Gout J et al (2020) Pancreatic cancer-derived organoids—a disease modeling tool to predict drug response. United European Gastroenterol j 8:594–606CrossRef Frappart PO, Walter K, Gout J et al (2020) Pancreatic cancer-derived organoids—a disease modeling tool to predict drug response. United European Gastroenterol j 8:594–606CrossRef
10.
Zurück zum Zitat Gout J, Perkhofer L, Morawe M et al (2021) Synergistic targeting and resistance to PARP inhibition in DNA damage repair-deficient pancreatic cancer. Gut 70:743–760CrossRef Gout J, Perkhofer L, Morawe M et al (2021) Synergistic targeting and resistance to PARP inhibition in DNA damage repair-deficient pancreatic cancer. Gut 70:743–760CrossRef
13.
Zurück zum Zitat Hingorani SR, Petricoin EF, Maitra A et al (2003) Preinvasive and invasive ductal pancreatic cancer and its early detection in the mouse. Cancer Cell 4:437–450CrossRef Hingorani SR, Petricoin EF, Maitra A et al (2003) Preinvasive and invasive ductal pancreatic cancer and its early detection in the mouse. Cancer Cell 4:437–450CrossRef
14.
Zurück zum Zitat Hingorani SR, Wang L, Multani AS et al (2005) Trp53R172H and KrasG12D cooperate to promote chromosomal instability and widely metastatic pancreatic ductal adenocarcinoma in mice. Cancer Cell 7:469–483CrossRef Hingorani SR, Wang L, Multani AS et al (2005) Trp53R172H and KrasG12D cooperate to promote chromosomal instability and widely metastatic pancreatic ductal adenocarcinoma in mice. Cancer Cell 7:469–483CrossRef
16.
Zurück zum Zitat Hohwieler M, Illing A, Hermann PC et al (2017) Human pluripotent stem cell-derived acinar/ductal organoids generate human pancreas upon orthotopic transplantation and allow disease modelling. Gut 66:473–486CrossRef Hohwieler M, Illing A, Hermann PC et al (2017) Human pluripotent stem cell-derived acinar/ductal organoids generate human pancreas upon orthotopic transplantation and allow disease modelling. Gut 66:473–486CrossRef
17.
Zurück zum Zitat Huang L, Desai R, Conrad DN et al (2021) Commitment and oncogene-induced plasticity of human stem cell-derived pancreatic acinar and ductal organoids. Cell Stem Cell 28:1090–1104.e6CrossRef Huang L, Desai R, Conrad DN et al (2021) Commitment and oncogene-induced plasticity of human stem cell-derived pancreatic acinar and ductal organoids. Cell Stem Cell 28:1090–1104.e6CrossRef
18.
Zurück zum Zitat Izumchenko E, Paz K, Ciznadija D et al (2017) Patient-derived xenografts effectively capture responses to oncology therapy in a heterogeneous cohort of patients with solid tumors. Ann Oncol 28:2595–2605CrossRef Izumchenko E, Paz K, Ciznadija D et al (2017) Patient-derived xenografts effectively capture responses to oncology therapy in a heterogeneous cohort of patients with solid tumors. Ann Oncol 28:2595–2605CrossRef
19.
Zurück zum Zitat Kleger A, Mahaddalkar PU, Katz SF et al (2012) Increased reprogramming capacity of mouse liver progenitor cells, compared with differentiated liver cells, requires the BAF complex. Gastroenterology 142:907–917CrossRef Kleger A, Mahaddalkar PU, Katz SF et al (2012) Increased reprogramming capacity of mouse liver progenitor cells, compared with differentiated liver cells, requires the BAF complex. Gastroenterology 142:907–917CrossRef
20.
Zurück zum Zitat Krüger J, Groß R, Conzelmann C et al (2021) Drug inhibition of SARS-CoV‑2 replication in human pluripotent stem cell-derived intestinal organoids. Cell Mol Gastroenterol Hepatol 11:935–948CrossRef Krüger J, Groß R, Conzelmann C et al (2021) Drug inhibition of SARS-CoV‑2 replication in human pluripotent stem cell-derived intestinal organoids. Cell Mol Gastroenterol Hepatol 11:935–948CrossRef
21.
Zurück zum Zitat Lee AYL, Dubois CL, Sarai K et al (2019) Cell of origin affects tumour development and phenotype in pancreatic ductal adenocarcinoma. Gut 68:487–498CrossRef Lee AYL, Dubois CL, Sarai K et al (2019) Cell of origin affects tumour development and phenotype in pancreatic ductal adenocarcinoma. Gut 68:487–498CrossRef
22.
Zurück zum Zitat Mueller S, Engleitner T, Maresch R et al (2018) Evolutionary routes and KRAS dosage define pancreatic cancer phenotypes. Nature 554:62–68CrossRef Mueller S, Engleitner T, Maresch R et al (2018) Evolutionary routes and KRAS dosage define pancreatic cancer phenotypes. Nature 554:62–68CrossRef
23.
Zurück zum Zitat Perkhofer L, Frappart PO, Müller M et al (2018) Importance of organoids for personalized medicine. Per Med 15:461–465CrossRef Perkhofer L, Frappart PO, Müller M et al (2018) Importance of organoids for personalized medicine. Per Med 15:461–465CrossRef
24.
Zurück zum Zitat Perkhofer L, Schmitt A, Romero Carrasco MC et al (2017) ATM deficiency generating genomic instability sensitizes pancreatic ductal adenocarcinoma cells to therapy-induced DNA damage. Cancer Res 77:5576–5590CrossRef Perkhofer L, Schmitt A, Romero Carrasco MC et al (2017) ATM deficiency generating genomic instability sensitizes pancreatic ductal adenocarcinoma cells to therapy-induced DNA damage. Cancer Res 77:5576–5590CrossRef
25.
Zurück zum Zitat Russell R, Ilg M, Lin Q et al (2015) A dynamic role of TBX3 in the pluripotency circuitry. Stem Cell Rep 5:1155–1170CrossRef Russell R, Ilg M, Lin Q et al (2015) A dynamic role of TBX3 in the pluripotency circuitry. Stem Cell Rep 5:1155–1170CrossRef
26.
Zurück zum Zitat Russell R, Perkhofer L, Liebau S et al (2015) Loss of ATM accelerates pancreatic cancer formation and epithelial-mesenchymal transition. Nat Commun 6:7677CrossRef Russell R, Perkhofer L, Liebau S et al (2015) Loss of ATM accelerates pancreatic cancer formation and epithelial-mesenchymal transition. Nat Commun 6:7677CrossRef
27.
Zurück zum Zitat Sato T, Vries RG, Snippert HJ et al (2009) Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature 459:262–265CrossRef Sato T, Vries RG, Snippert HJ et al (2009) Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature 459:262–265CrossRef
28.
Zurück zum Zitat Schwank G, Koo BK, Sasselli V et al (2013) Functional repair of CFTR by CRISPR/Cas9 in intestinal stem cell organoids of cystic fibrosis patients. Cell Stem Cell 13:653–658CrossRef Schwank G, Koo BK, Sasselli V et al (2013) Functional repair of CFTR by CRISPR/Cas9 in intestinal stem cell organoids of cystic fibrosis patients. Cell Stem Cell 13:653–658CrossRef
29.
Zurück zum Zitat Seppälä TT, Zimmerman JW, Sereni E et al (2020) Patient-derived organoid pharmacotyping is a clinically tractable strategy for precision medicine in pancreatic cancer. Ann Surg 272:427–435CrossRef Seppälä TT, Zimmerman JW, Sereni E et al (2020) Patient-derived organoid pharmacotyping is a clinically tractable strategy for precision medicine in pancreatic cancer. Ann Surg 272:427–435CrossRef
30.
Zurück zum Zitat Spear S, Candido JB, McDermott JR et al (2019) Discrepancies in the tumor microenvironment of spontaneous and orthotopic murine models of pancreatic cancer uncover a new immunostimulatory phenotype for B cells. Front Immunol 10:542CrossRef Spear S, Candido JB, McDermott JR et al (2019) Discrepancies in the tumor microenvironment of spontaneous and orthotopic murine models of pancreatic cancer uncover a new immunostimulatory phenotype for B cells. Front Immunol 10:542CrossRef
31.
Zurück zum Zitat Tiriac H, Belleau P, Engle DD et al (2018) Organoid profiling identifies common responders to chemotherapy in pancreatic cancer. Cancer Discov 8:1112–1129CrossRef Tiriac H, Belleau P, Engle DD et al (2018) Organoid profiling identifies common responders to chemotherapy in pancreatic cancer. Cancer Discov 8:1112–1129CrossRef
32.
Zurück zum Zitat Vlachogiannis G, Hedayat S, Vatsiou A et al (2018) Patient-derived organoids model treatment response of metastatic gastrointestinal cancers. Science 359:920–926CrossRef Vlachogiannis G, Hedayat S, Vatsiou A et al (2018) Patient-derived organoids model treatment response of metastatic gastrointestinal cancers. Science 359:920–926CrossRef
33.
Zurück zum Zitat Walsh NC, Kenney LL, Jangalwe S et al (2017) Humanized mouse models of clinical disease. Annu Rev Pathol 12:187–215CrossRef Walsh NC, Kenney LL, Jangalwe S et al (2017) Humanized mouse models of clinical disease. Annu Rev Pathol 12:187–215CrossRef
34.
Zurück zum Zitat Weidenhofer J, Colvin E, Bond D et al (2016) Animal models of pancreatic cancer and their application in clinical research. Gastrointest Cancer Targets Ther 6:31–39CrossRef Weidenhofer J, Colvin E, Bond D et al (2016) Animal models of pancreatic cancer and their application in clinical research. Gastrointest Cancer Targets Ther 6:31–39CrossRef
35.
Zurück zum Zitat Weidgang CE, Russell R, Tata PR et al (2013) TBX3 directs cell-fate decision toward mesendoderm. Stem Cell Rep 1:248–265CrossRef Weidgang CE, Russell R, Tata PR et al (2013) TBX3 directs cell-fate decision toward mesendoderm. Stem Cell Rep 1:248–265CrossRef
36.
Zurück zum Zitat Wiedenmann S, Breunig M, Merkle J et al (2021) Single-cell-resolved differentiation of human induced pluripotent stem cells into pancreatic duct-like organoids on a microwell chip. Nat Biomed Eng 5(8):897–913CrossRef Wiedenmann S, Breunig M, Merkle J et al (2021) Single-cell-resolved differentiation of human induced pluripotent stem cells into pancreatic duct-like organoids on a microwell chip. Nat Biomed Eng 5(8):897–913CrossRef
Metadaten
Titel
Modellsysteme in der gastroenterologischen Forschung
Vom Tiermodell über humane Organoide in die Klinik
verfasst von
Frank Arnold
Prof. Dr. Alexander Kleger
Publikationsdatum
08.10.2021
Verlag
Springer Medizin
Erschienen in
Die Pathologie / Ausgabe Sonderheft 2/2021
Print ISSN: 2731-7188
Elektronische ISSN: 2731-7196
DOI
https://doi.org/10.1007/s00292-021-00996-9

Weitere Artikel der Sonderheft 2/2021

Die Pathologie 2/2021 Zur Ausgabe

Leitlinien kompakt für die Innere Medizin

Mit medbee Pocketcards sicher entscheiden.

Seit 2022 gehört die medbee GmbH zum Springer Medizin Verlag

Update Innere Medizin

Bestellen Sie unseren Fach-Newsletter und bleiben Sie gut informiert.